Breve presentación que forma parte de los PROCEDIMIENTOS OBLIGATORIOS ESTANDARIZADOS de un laboratorio

2. OBJETIVO
Contar con el material del Laboratorio Clínico, que
permite su re-uso, limpio, seco y libres de sustancias
que causen alteraciones en el desarrollo de las
actividades del laboratorio clínico, como elemento de
calidad de los análisis que se procesan.

3. ALCANCE
Este documento será tomado como referencia para la
consulta de Procedimientos Debido a la alta exposición
y a la ocurrencia de accidentes de trabajo a las cuales
está expuesto todo el personal que labora en dicha
área, con el fin de prevenir la aparición de
enfermedades.

4. RESPONSABILIDAD
 La responsabilidad para la limpieza de
laboratorio de las diferentes áreas será el
personal de laboratorio.

5. DEFINICIONES
La limpieza y desinfección de laboratorio es de suma
importancia ya que previene o detiene el crecimiento
de los microorganismos.
ESTERILIZACION: Es la
destrucción o eliminación
completa de todas las formas de
vida de microorganismos que se
encuentran asentadas en forma
definitiva o transitoria y evitar su
reproducción en un objeto o
sustancia. Puede llevarse a cabo
por procesos físicos o químicos
(vapor a presión, calor seco, calor
húmedo, líquidos químicos).
DESINFECCION: Es un
proceso que elimina la
mayoría o todos los
microorganismos sobre los
objetos inanimados con la
excepción de esporas
bacterianos. Se efectúa por
medio de agentes químicos,
clasificados en tres
categorías: Alta, intermedia y
baja, según la intensidad de
su acción.
LIMPIEZA: Es la
remoción física de
materia orgánica o
suciedad de los objetos.
Generalmente se realiza
utilizando agua, con o
sin detergentes.

6. MÉTODOS DE ESTERILIZACIÓN Y
DESINFECCIÓN
Antes de realizar cualquier procedimiento de desinfección
o de esterilización es importante lavar todo el
instrumental.

7. METODO DE
ESTERILIZACION
Calor: El calor provoca
desnaturalización de
proteínas, fusión y
organización de las
membranas y/o procesos
oxidantes irreversibles en
los microorganismos.
Es el agente físico más
utilizado en la
especialidad de
bacteriología y posee dos
variantes:
CALOR SECO
El calor seco produce desecación de la célula, es toxico por
niveles elevados de electrolitos, cuenta con los siguientes
métodos.
- Flameado. Este método consiste en someter directamente a
la llama de un mechero, el objeto que se desea flamear, así
puedan ser esterilizadas hojas de bisturí, pinzas, asa, y agujas
bacteriológicas; Sabremos que el material esta estéril el
momento en que se ponga al rojo vivo.
CALOR HUMEDO
El calor húmedo produce desnaturalización y coagulación
de proteínas, cuenta con los siguientes métodos.
- Autoclave. Se realiza la esterilización por el vapor de agua
a presión. El fundamento de este procedimiento se basa en
la saturación del calor húmedo (vapor a presión). Se
esteriliza los materiales, reactivos, medios de cultivo,
muestras biológicas y otros a 120°, por un lapso de 15 a 30
min.

8. REQUISITOS GENERALES
Ambientes de toma de muestras y las diferentes áreas de
laboratorio.
Equipos de Protección
individual.
• Guantes
descartables
• Mandil clínico
• Barbijo
• Lentes protectores
• Gorro Clínico
Materiales de
Laboratorio.
• Recipientes de
vidrio
• Bandejas
• Mechero
Insumos de
limpieza:
• Agua
• Jabón desinfectante
• Papel
•Toallas limpias
• Bolsas de plastico
• Cepillos
• Detergentes (ACE
Patito o Ace Fom)
• Detergentes liquidos
• Alcoholes
• Agua destilada
Reactivos de Limpieza.
• Hipoclorito de Sodio al
0,5%, 1%.
Equipo.
• Autoclave
•Estufas de secado

9. CONDICIONES GENERALES
En el desarrollo del lavado y desinfección, se deben usar productos
biodegradables, que garanticen asepsia en el proceso y no dejen residuos
químicos que puedan interferir en los procedimientos del laboratorio, ni
causar daño en el ambiente
Garantizar medidas de bioseguridad.
Es importante que el material de vidrio este totalmente limpio para asegurar
que las reacciones sean confiables.
Todo el material que se usa en Laboratorio debe lavarse por separado: Química
sanguínea, Hematología, parasitología, bacteriología. Inmediatamente después
de utilizar el material (tubos, pipetas, tips, etc.) descartar adecuadamente en
los residuos biológicos y colocarlos en el recipiente que contenga agua con
hipoclorito de sodio en una concentración final de 5.000 p.p.m (0,5%) durante
2 horas, esta solución descontamina el material antes de lavarlos.

10. PROCEDIMIENTO
LAVADO DE LOS MATERIALES FUNGIBLES
Como ser utensilios de vidrios sucios, matraz, probetas, vasos de
precipitado, tubos de ensayo
• Primer enjuague.
Enjuague los
utensilios dos
veces con agua
fría o tibia (los
tubos con
residuos nunca se
deben enjugar
con agua
caliente).
• Remoje en solución detergente. En
una cubeta prepare agua con
detergente de limpieza en polvo o
en liquido. Coloque en ella los
utensilios de vidrio, plástico,
límpielos por dentro con el cepillo y
déjelos remojar durante 2-3 horas.
• Enjuague. Saque de la cubeta los
utensilios, uno a uno y enjuague
cada uno detenidamente con
chorro de agua de grifo y a
continuación coloque todos a la
cubeta con agua durante 30 min.
Enjuague nuevamente con agua
limpia (se debe recordar que los
restos de detergente en los
recipientes pueden causar
resultados falsos en laboratorio)

11. • Escurrirlos. Coloque los
recipientes 8matraces,
probetas, vasos y
otros) en vajillas de
una rejilla de pared
para secado. Ponga los
tubos con las bocas
hacia abajo en una
canastilla de alambre.
• Secado. Ponga los
utensilios en canastillas
de alambre y séquelos
en una estufa caliente
de 60°C. De lo
contrario coloque la
canastilla en un lugar
soleado del laboratorio
y cúbralos con una
pieza delgada de tela.
• Taponamiento. El material
seco y limpio se deberá
guardar en una vitrina o
estante para conservarlo
del polvo.

12. Limpieza de pipetas
• Enjuague inmediato,
tan pronto como se
haya utilizado una
pipeta se debe
enjuagar con chorro de
agua fría para limpiarla
la sangre, orina, suero,
reactivos, etc.
• Remojo en agua. Después de
enjuagarlas coloque las
pipetas en una probeta
grande, de material plástico o
en una cubeta llena de agua.
Si las pipetas se han utilizado
para medir material infeccioso
déjelas en una probeta llena
de solución desinfectante
(fenol al 2%) durante 24 horas.
• Remoje en solución
detergente. En una cubeta
prepare agua con
detergente de limpieza en
polvo o en liquido. Coloque
en ella los utensilios de
vidrio, plástico, límpielos
por dentro con el cepillo y
déjelos remojar durante 2-3
horas.

13. • Enjuague. Saque de la cubeta los utensilios,
uno a uno y enjuague cada uno
detenidamente con chorro de agua de grifo
y a continuación coloque todos a la cubeta
con agua durante 30 min. Enjuague
nuevamente con agua limpia (se debe
recordar que los restos de detergente en los
recipientes pueden causar resultados falsos
en laboratorio).
• Escurrirlos. Coloque las
pipetas) en vajillas
secado. Ponga las
pipetas con las bocas
hacia abajo en una pieza
de tela.

14. LIMPIEZA DE LOS PORTA OBJETOS
• En una cubeta o bandeja que contenga detergente coloque los portaobjetos, se debe
frotar con un algodón o esponja uno a uno y dejar reposar durante 1-2 hora.
• Limpiar el portaobjeto uno a uno con un trapo suave que no desprenda pelusas y
seleccionar aquellos que tengan restos de colorantes, raspados, color amarillento o opaco,
una vez seleccionado guardarlos en sus cajas o en paquetes de 10 a 20 piezas
envolviéndolas en hojas pequeñas de papel.
• Portaobjetos con aceite de inmersión. Tome los portaobjetos uno a uno y frótelos con el
periódico para limpiarles del aceite hasta donde sea posible.
• Portaobjetos con cubreobjetos. Separe los cubreobjetos de los portaobjetos con una punta
de aguja o el extremo de una pinza y coloque en una bandeja con hipoclorito de sodio al
2% y dejar reposar de 1-2 horas.
• Enjuagarlos en la misma bandeja, agitándoles suavemente varias veces y finalmente con
agua destilada y secarlos si es posible en horno de aire caliente a 60°C y guardarlos en un
recipiente porque son muy frágiles

15. DESINFECCION DE EQUIPOS
Por parte de la Bacterióloga, se hace a diario con un paño seco se remueve el polvo, luego con
un paño humedecido en solución de detergente enzimático, se limpia toda la superficie de los
equipos.
Cada una de las bacteriólogas encargadas de sus respectivas áreas se encargan de la limpieza de
los equipos de acuerdo a las recomendaciones de las casas comerciales de estos equipos.
En cada área se lleva un control del mantenimiento y limpieza de cada equipo el cual es
controlado y verificado por la bacterióloga encargada del área.

16. DESCARTE DE DESECHOS BIOLOGICOS
DURANTE LA ACTIVIDAD DE LABORATORIO
DESCARTE DE CORTOPUNZANTES
• Todo objeto corto punzante
contaminado se debe colocar en
recipientes de paredes rígidas con
tapadera.
• Los recipientes de paredes rígidas se
deben colocar lo más cerca posible del
lugar donde se utiliza el objeto a
descartar.
• Llenar el recipiente de descarte hasta
sus dos tercios de su capacidad.
• Retirar estos recipientes y descartarlos
como material bioinfeccioso
cortopunzante.
DESCARTE DE MUESTRA DE ORINA.
• Para el descarte agregar a la orina
hipoclorito de sodio 5% hasta obtener
una dilución 1:10
• Dejar en reposo sin tapar por 30 min.
Como mínimo.
• Descartar las orinas ya tratadas con el
hipoclorito de sodio en la red de
drenaje.

17. DESCARTE DE MUESTRA DE SANGRE,
SUERO, PLASMA.
• Para el descarte a la sangre y sus
derivados agregar hipoclorito de sodio
5% hasta obtener una dilución 1:10
• Dejar en reposo sin tapar por 30 min.
Como mínimo.
• Descartar las muestras de sangre, suero,
plasma ya tratadas con el hipoclorito de
sodio en la red de drenaje
DESCARTE DE MUESTRA DE HECES.
• Los frascos donde se recolectar las
heces deben ser de plástico.
• Utilizar el equipo de protección
individual.
• Se coloca los frascos con heces en una
bolsa de plástico con las tapas bien
cerradas.
• Posteriormente colocar las bolsas en la
caja sanitaria roja retornables la cual
debe ser entregada al personal de
recolección de desechos biológicos
infecciosos.